Zjazd PTMSiK 2019 Lublin

 

Termin zgłaszania chęci uczestnictwa w warsztatach:                                                         31 lipca 2019 r.*

 

Termin wnoszenia opłaty rejestracyjnej:                                                                           31 lipca 2019 r.**

 

 

* – z uwagi na ograniczoną ilość przewidzianych miejsc zachęcamy do wcześniejszej rejestracji w planowanych warsztatach i informujemy, że w przypadku wyczerpania limitu rejestracja uczestników może zostać zakończona przed podanym terminem (podczas zapisów określona zostanie maksymalna ilość osób dopuszczonych do udziału w warsztatach, które pochodzą z jednego ośrodka)

 

** – opłata rejestracyjna zostanie przeznaczona na pokrycie dodatkowych kosztów organizacji

 

Uwaga: formularze rejestracyjne są udostępnione w zakładce „Do pobrania”

 

 

              

 

Warsztaty genetyczne

 

Technologia NGS w analizie molekularnej śladów biologicznych​

 

Praktyczne warsztaty genetyczne organizowane przez KiZMS UM w Lublinie przy wsparciu merytorycznym i technicznym firm Analityk i Analityk Genetyka oraz firmy Verogen.

 

 

Część teoretyczna poświęcona będzie analizie prób trudnych oraz zestawom do przygotowania bibliotek szlakiem ForenSeq Signature Prep Kit. Kolejnym punktem spotkania będzie prezentacja i omówienie wprowadzonego właśnie na rynek produktu firmy Verogen, jakim jest oprogramowanie analityczne przystosowane do analiz mitochondrialnego DNA: ForenSeq mtDNA.

 

Część praktyczna warsztatów poświęcona zostanie protokołowi ForenSeq Signature Prep Kit (szlaki preparatyczne ForenSeq oraz ForenSeq mtDNA są nieomal identyczne). Plan warsztatów umożliwi kompleksowe zapoznanie się z najnowszą ofertą firmy Verogen.

 

Do pobrania szczegółowy plan warsztatów, link poniżej (plik PDF).

 

 

 

 

 

 

 

   

 

Warsztaty toksykologiczne, środa 18 września

1. 8:30 – 9.00 (Sala seminaryjna 2.02). Warsztaty toksykologiczne I. Wprowadzenie: przedstawienie celów warsztatów oraz omówienie zastosowania prezentowanej metody analitycznej.
2. 9.00 – 9:45 (Laboratorium Toksykologiczne). Część praktyczna z omówieniem etapów postępowania analitycznego: przygotowanie stanowiska, przedstawienie stosowanych materiałów (odczynniki chemiczne i substancje wzorcowe), wykonanie ekstrakcji ksenobiotyków z materiału dowodowego (krew pełna).
3. 9.45 – 12.00 (Sala seminaryjna 2.02). Warsztaty toksykologiczne II
   • Wysokorozdzielczy spektrometr mas w rutynowych analizach kryminalistycznych.
   • Jak uniknąć kontaminacji w analizach toksykologicznych z wykorzystaniem spektrometrii mas.
   • Bezpośrednie metody analizy próbek z wykorzystaniem spektrometrii mas.
   • Hybrydowy spektrometr QTRAP jako koń roboczy w analizach kryminalistycznych.
4. 12.00 – 12.30 Przerwa.
5. 12.30 – 14:00 c.d. Warsztaty toksykologiczne I. (Laboratorium Toksykologiczne). Zakończenie części praktycznej: przygotowanie ekstraktów i wykonanie analizy instrumentalnej LC/MS-liniowa pułapka jonowa. (Sala seminaryjna) Demonstracja przykładowego chromatogramu z widmem mas całkowitego prądu jonowego (TIC), analiza przesiewowa danych i wykonanie analizy potwierdzającej z wykorzystaniem trybu MS/MS, interpretacja wyników z zastosowaniem bibliotek widm masowych NIST oraz mzCloud.

 

UWAGA: Warsztaty toksykologiczne II (9.45 – 12.00, sala seminaryjna 2.02) mają charakter otwarty i nie wymagają uprzedniej rejestracji uczestników

 

 

 

 

 

 

 

Warsztaty z zakresu obrazowania medycznego (18 września 2019, środa)

 

Praktyczne warsztaty organizowane przez KiZMS UM w Lublinie przy wsparciu merytorycznym i technicznym firm TMS Sp. z o. o. i Canon Medical Systems.

 

• Warsztaty z nowych technik opracowania badań TK przy użyciu oprogramowania Vitrea:

1)    Wprowadzenie i prezentacja możliwości konsoli diagnostycznej Vitrea (TMS Sp. z o. o. / Canon Medical Systems).

2)    Praktyczne zastosowania wybranych funkcji konsoli diagnostycznej Vitrea w diagnostyce medyczno-sądowej (dr hab. Grzegorz Staśkiewicz – specjalista radiolog, kierownik Pracowni Wirtualnego Człowieka UM w Lublinie).

 

• Wprowadzenie do skanowania 3D i druku 3D

1)    Skanowanie obiektów biologicznych przy użyciu ręcznego skanera SLS (technologia światła strukturyzowanego).

2)    Przygotowanie 3-wymiarowych obiektów do druku 3D.

3)    Przykłady praktycznego wykorzystania drukarki 3D.